白质即时吸收的肌肉合成促进作用。
[0064] 根据本发明的再另外的实施方式，提供包装容器装的乳饮料的制造方法，包括:将 乳蛋白质混合物添加到选自生乳、灭菌乳、浓缩乳、乳粉和复原乳中的一种以上之中的工 序，以及加热灭菌的工序，其中，将乳蛋白质混合物调整为以总蛋白质量计为8g/200ml以 上，优选为8~20g/200ml，更优选为9~20g/200ml，进一步优选为9~15g/200ml，特别优选 为10~15g/200ml，并且将乳脂肪量调整为8g/200ml以下，优选为0.1~8g/200ml，更优选为 0.1~6g/200ml，进一步优选为0.5~4g/200ml，特别优选为0.5~3g/200ml，所述乳蛋白质 混合物包含酪蛋白蛋白质和乳清蛋白质，酪蛋白蛋白质相对于乳清蛋白质的蛋白质量比 (酪蛋白蛋白质/乳清蛋白质）为2~20,该乳饮料被赋予了基于蛋白质即时吸收的肌肉合成 促进作用。
[0065] 所谓"复原乳"，表示将乳粉、浓缩乳等乳原料分散/溶解于水中而调制的液状乳。 前述乳原料可举出例如，全脂乳粉、脱脂乳粉、全脂浓缩乳、脱脂浓缩乳、黄油、奶油、炼乳 等，只要是从生乳、灭菌乳(牛乳等）、脱脂乳、成分调制牛乳、加工乳等中除去水分的乳原料 就不特别限制，这些乳原料可以混合一种以上来使用。前述乳饮料未观察到由乳清蛋白质 的热变性引起的凝集(参照实施例2)，因此，与本发明的肌肉合成促进剂同样地维持蛋白质 即时吸收效果。
[0066] 根据本发明的另外的实施方式，提供肌肉合成促进方法，包括使需要蛋白质即时 吸收的对象摄取乳蛋白质混合物，所述乳蛋白质混合物包含酪蛋白蛋白质和乳清蛋白质， 酪蛋白蛋白质相对于乳清蛋白质的蛋白质量比（即酪蛋白蛋白质/乳清蛋白质）为2~20。
[0067] 根据本发明的优选的实施方式，提供除了对人的医疗行为以外的肌肉合成促进方 法，包括使需要蛋白质即时吸收的对象摄取乳蛋白质混合物，所述乳蛋白质混合物包含酪 蛋白蛋白质和乳清蛋白质，酪蛋白蛋白质相对于乳清蛋白质的蛋白质量比（酪蛋白蛋白质/ 乳清蛋白质)为2~20。这里，所谓"对人的医疗行为"，表示需要医师等的处方，使人摄取(给 予）药品的行为等。本发明的肌肉合成促进剂方法可以按照本说明书中记载的关于本发明 的肌肉合成促进剂的内容实施。
[0068] 根据本发明的一个优选的实施方式，在本发明的肌肉合成促进方法中，可以以总 蛋白质量计为每餐〇.13g以上/kg体重的方式摄取(给予)前述乳蛋白质混合物，具体而言， 可以以0.13~0.7g/kg体重、优选为0.13~0.6g/kg体重、更优选为0.13~0.5g/kg体重、进 一步优选为〇. 15~0.4g/kg体重、特别优选为0.2~0.4g/kg体重的方式摄取。
[0069] 根据本发明的一个优选的实施方式，在本发明的肌肉合成促进方法中，可以以总 蛋白质量计为每餐8g以上的方式摄取如述乳蛋白质混合物，具体而目，可以以8~40g、优选 为8~20g、更优选为9~20g、进一步优选为9~15g、特别优选为10~15g的方式摄取。
[0070] 根据本发明的一个实施方式，在本发明的肌肉合成促进方法中，可以使需要蛋白 质即时吸收的对象以加温的液状形态摄取前述乳蛋白质混合物。
[0071] 根据本发明的一个实施方式，提供肌肉合成促进剂的使用，所述肌肉合成促进剂 用于促进需要蛋白质即时吸收的对象的肌肉合成，所述肌肉合成促进剂包含乳蛋白质混合 物，所述乳蛋白质混合物包含酪蛋白蛋白质和乳清蛋白质，酪蛋白蛋白质相对于乳清蛋白 质的蛋白质量比（酪蛋白蛋白质/乳清蛋白质）为2~20。本发明的肌肉合成促进剂的使用可 以按照本说明书中记载的关于本发明的肌肉合成促进剂的内容实施。
[0072]根据本发明的一个实施方式，提供肌肉合成促进剂的使用，所述肌肉合成促进剂 用于制造用于促进需要蛋白质即时吸收的对象的肌肉合成的饮食品或药品，所述肌肉合成 促进剂包含乳蛋白质混合物，所述乳蛋白质混合物包含酪蛋白蛋白质和乳清蛋白质，酪蛋 白蛋白质相对于乳清蛋白质的蛋白质量比（酪蛋白蛋白质/乳清蛋白质）为2~20。本发明的 肌肉合成促进剂的使用可以按照本说明书中记载的关于本发明的肌肉合成促进剂的内容 实施。
[0073]另外，这里省略了具体的实验结果等，但根据本发明的一个实施方式，不仅发挥优 异的肌肉合成促进作用(肌肉合成促进效果），还能够一并发挥优异的体水分保持作用(体 水分保持效果）。因此，对于本发明，可以期待在现有的以乳清蛋白质为主成分的药品、饮食 品等中不能获得的特有的效果。
[0074] 以下通过实施例详细说明本发明，但本发明不受这些实施例限定。
[0075] 实施例
[0076] 实施例1:基于乳蛋白质混合物的肌肉合成促进作用 [0077] (1)大鼠的游泳试验
[0078]实验动物使用初期体重为140~160g的SD系雄性大鼠（从日本夕株式会社获 得）。对于大鼠，以每个试验区(组)不产生体重差的方式分为6组，每组9~10只。所有的大鼠 在光照期为7时~19时、黑暗期为19时~7时、室温22 ± 2°C的条件下，在不锈钢制鼠笼内分 别单个饲养。
[0079]使用固体饲料（才1；工^夕少酵母工业株式会社制），对大鼠进行预饲养3~4天，然 后按照以下的方案进行大鼠的游泳试验(使大鼠运动）。
[0080][大鼠的游泳试验(运动)方案]
[0081] 第1天:使大鼠在无重量负荷的条件下，进行2小时的游泳运动、45分钟的休息、2小 时的游泳运动总计4小时的游泳运动。使其自由摄取进行运动后的饲料(固体饲料MF)。
[0082] 第2天:使大鼠在无重量负荷的条件下，进行3小时的游泳运动、45分钟的休息、3小 时的游泳运动总计6小时的游泳运动。使其自由摄取进行运动后的饲料(固体饲料MF)。 [0083]第3天:使大鼠在无重量负荷的条件下，进行3小时的游泳运动、45分钟的休息、3小 时的游泳运动总计6小时的游泳运动。作为进行运动后的饲料，使其摄取5g的限制食(粉末 饲料MF) 〇
[0084]在上述3天的运动之后，使大鼠在无重量负荷的条件下，进行2小时的游泳运动。而 且，使用乳蛋白质和milliQ水调制乳饮料(乳蛋白质溶液），使其为表1所示的蛋白质的浓 度。在该3天的运动之后，以24.24ml/kg BW使大鼠经口摄取乳饮料和mi 11 iQ水(试验区1~5 和比较区1)。这里，乳蛋白质使用了乳蛋白质浓缩物(1?0480,7才^于歹社制，乳蛋白质 77.2重量％、乳脂肪分1.2重量％、乳糖9.2重量％、灰分7.1重量％、水分5.3重量％)。该 MPC480是对脱脂乳进行膜分离处理(UF处理、MF处理等），除去乳糖、灰分，以酪蛋白蛋白质 和乳清蛋白质为主体进行了浓缩的、酪蛋白蛋白质和乳清蛋白质的混合物，其形态是干燥 粉末。而且，MPC480的蛋白质量比与生乳（牛乳）相同，酪蛋白蛋白质：乳清蛋白质=约8:2 (参照山内邦男和横山健吉编，综合辞典）。
[0085]在经口摄取45分钟之后，从尾静脉以每200g体重0.4ml的量注射氘标记苯丙氨酸 溶液(将氘标记苯丙氨酸22.5mg溶解于生理盐水Iml中调制的）。从注射起15分钟后（即，从 经口摄取60分钟后），在异氟醚麻醉下进行解剖。从腹部大静脉进行全采血，然后摘出肱三 头肌(样品），用生理盐水洗涤，立即用液氮冷冻。正确记录注射的时刻和样品的冷冻保存的 时刻。样品保存在-80 °C直到分析时为止。
[0086]表1:各浓度的乳蛋白质溶液的配合
[0088] (2)骨骼肌合成速度(FSR)的测定
[0089]基于现有文献(A.Kanda et al. ,Br J Nutr,Feb.7,1-7,2013)的记载，对于样品 测定骨骼肌合成速度(FSR)。具体而言，使用LC/MS/MS(WaterS社制），分别定量骨骼肌细胞 中存在的、或者在骨骼肌血液中以游离状态存在的苯丙氨酸(Phe)和稳定性同位素标记苯 丙氨酸(Phe(Ring-D5))。其测定条件如下。即，装置:LC/MS/MS(Waters社制），柱:ACQUITY UPLC BEH C18(Waters社制），流动相：0.05%TFA水/含0.05%TFA的乙腈，进样量3μ1，流速 0.3ml/min，UV 215nm〇
[0090] 这里，通过下式算出骨骼肌合成速度(FSR)。
[0091] FSR(%/日）= (EbX100)/(EaXt)
[0092] Ea:上清样品的富集度 [0093] Eb:骨骼肌样品的富集度
[0094] t:从注射注射溶液开始，至冷冻保存样品为止的时间(单位：日）
[0095] 富集度= Phe(Ring-D5)/(P