br>[0073] 本步骤中，较佳地，预先设置的高度为10cm。
[0074] 本发明实施例中，在配制的Hogland营养液中进行选取的目标水生蔬菜的砂培培 育，与在受试溶液进行选取的目标水生蔬菜的砂培培育相类似。本发明实施例中，设置不加 受试物的Hogland营养液进行目标水生蔬菜的砂培培育是作为对照。
[0075] 本发明实施例中，在完成砂培培育阶段后，选取株高一致的幼苗进行水培培育。
[0076] 作为一可选实施例，结束砂培培育，进入水培培育预先设置的时间包括：
[0077] 将砂培培育的幼苗从砂培基质中取出，在尽量减少对目标水生蔬菜根部损伤的情 况下，用蒸馏水冲掉目标水生蔬菜根部的石英砂颗粒，然后移栽到用于水培培育的一个或 多个栽植盘中，栽植盘中设置有多个栽植孔，每一栽植孔移栽2-3株幼苗，每一栽植盘移栽 15-20株幼苗，栽植盘下部放入受试溶液20L，以保证目标植物（水生蔬菜）幼苗根部浸入 受试溶液，每一受试溶液浓度设置3个重复，水培28天后结束。
[0078] 与砂培培育相类似，在水培培育阶段中，同时设置不加受试物溶液的Hogland营 养液作为空白对照，即在Hogland营养液中进行目标水生蔬菜砂培培育的基础上，再进行 水培培育。在空白对照组中，每一 Hogland营养液浓度设置2个重复，共约40株蔬菜。
[0079] 本发明实施例中，水培环境条件与砂培环境条件相同。在试验中，环境应满足以下 的条件：
[0080] a)温度变化小于±2°C ;
[0081] b)溶解氧浓度不小于60 %空气饱和值；
[0082] c)在吸收期，试验容器中的受试物溶液浓度应保持在±20%变化范围内；
[0083] d)试验结束时，空白对照组和试验组目标水生蔬菜的死亡率或其他不良影响小于 10% ;当试验延长数周或数月时，两组中目标水生蔬菜每月死亡率或其他不良影响应小于 5 %，并且在整个过程中死亡率不超过30 %。
[0084] 所应说明的是，对于使用了助溶剂的受试溶液，应使助溶剂的体积浓度小于 0. lmL/L，且在所有试验中的浓度应相同，并测定助溶剂的有机碳含量；同时，应设置稀释水 对照组或助溶剂对照组。
[0085] 步骤103,按照预先设置的取样周期对培育的目标水生蔬菜以及受试溶液进行取 样和分析，得到受试物在目标水生蔬菜内的浓度与受试溶液实际浓度；
[0086] 本步骤中，在砂培培育以及水培培育过程中，按照预先设置的取样周期对培育中 的目标水生蔬菜以及受试溶液进行取样和分析。其中，取样周期可根据实际需要确定。 [0087] 本步骤中，分析包括：受试物溶液浓度分析以及目标水生蔬菜分析，其中，按照预 先设置的取样周期对培育的目标水生蔬菜以及受试溶液进行取样和分析包括：
[0088] B11，在砂培培育以及水培培育过程中，按照预先设置的溶液更换周期更换受试溶 液；
[0089] 本步骤中，对于受试物溶液浓度分析，每一玻璃育苗装置或栽植盘，每5-7天（预 先设置的溶液更换周期）更换一次全部的受试溶液，在两次更换期间，不断添加蒸馏水以 弥补受试溶液（砂培和水培）的蒸发损失。
[0090] B12,测试更换受试溶液前后的受试溶液浓度,将更换受试溶液前后的受试溶液浓 度的平均值作为受试溶液实际浓度；
[0091 ] 本步骤中，取样时，对于每一玻璃育苗装置或栽植盘，在实验前和每次更换受试溶 液前后，测定受试溶液浓度，将受试溶液更换前和更换后的平均值作为试验期间受试溶液 实际浓度。
[0092] 作为一可选实施例，在取样时，可以利用虹吸原理，使用惰性材料管从玻璃育苗装 置或栽植盘的中部区域采集受试溶液水样供分析测定。
[0093] 本发明实施例中，对于多次取样，对应有多个受试溶液实际浓度。即对于每一次取 样，得到一受试溶液实际浓度。
[0094] 本发明实施例中，水培培育阶段包括：吸收阶段以及清除阶段。较佳地，在吸收阶 段，至少采集5次；在清除阶段，至少4次。当然，实际应用中，如果根据该取样次数较难计 算出后续足够精确的生物富集系数（BCF，Biological Concentration Factor)值，可以增 加取样次数以保障BCF值的计算精度，其中，生物富集是指试验生物体（或特定组织），例 如，目标水生蔬菜内某种受试物（例如，镉）的浓度相对于试验介质（受试溶液）中该受试 物的浓度增加，而BCF是指试验吸收阶段的任何时间，试验生物体（或特定组织）内某种受 试物溶液浓度与试验介质（受试溶液）中该物质浓度的比率。
[0095] B13,按照预先设置的溶液更换周期，采集目标水生蔬菜，获取该溶液更换周期内 的受试物在目标水生蔬菜内的浓度；
[0096] 本步骤中，每次进行目标水生蔬菜取样时，从各浓度的受试物溶液对应的玻璃育 苗装置或栽植盘取出适当数量的目标水生蔬菜（最少9株），快速用蒸馏水冲洗，将每株分 为地上部和地下部，地上部分吸干体表水分后测定鲜重，然后45°C烘干至恒重，地下部不做 测试，每3株合并为一组处理，随机分为3组后，对其受试物干重浓度进行测定。
[0097] 较佳地，在对蔬菜和水样进行采集后，应尽快测定，以避免降解或其他方面的损 失，并近似计算吸收和清除速率。
[0098] B14,以溶液更换周期为横坐标，受试物浓度为纵坐标，将受试溶液实际浓度以及 受试物在目标水生蔬菜内的浓度绘制在坐标轴上；
[0099] B15,如果曲线已经达到了一个稳定的状态，即受试物浓度已经变成了一条与时间 轴近似平行的渐近线。
[0100] 本步骤中，当受试物在生物体内浓度对应时间坐标轴所绘曲线与时间轴趋于平行 (变化幅度在+20% )状态时，成为稳定态，获取该稳定态时对应的受试物在目标水生蔬菜 内的浓度与受试溶液实际浓度。
[0101] 步骤104,计算得到的受试物在目标水生蔬菜内的浓度与受试溶液实际浓度的比 值，获取水生蔬菜污染物富集系数。
[0102] 本步骤中，在稳定状态下，试验生物体（或特定组织）内某种受试物的溶液浓度与 试验介质中该受试物的浓度的比率称为稳定态生物富集系数。即将稳定态时对应的受试物 在目标水生蔬菜内的浓度除以稳定态时对应的受试溶液实际浓度，比值即为水生蔬菜污染 物富集系数。其中，BCF值表示为目标水生蔬菜地上部总湿重的函数，需要依据目标水生蔬 菜干重浓度与含水率进行换算。
[0103] 本发明实施例中，利用式（1)计算稳定状态的生物富集系数（BCFSS):
[0104] ,、 .....................(1 )
[0105] 式中：
[0106] Cv为稳定态时对应的受试物在目标水生蔬菜内的浓度，即目标水生蔬菜组织中受 试物的平均浓度，也就是受试物在目标水生蔬菜内的浓度；
[0107] Cw为稳定态时对应的受试溶液实际浓度，即受试液中的受试物平均浓度，也就是 受试溶液实际浓度。
[0108] 实际应用中，如果取样分析得到的绘制在坐标轴上的曲线没有达到稳定态，则可 以计算出80%或95%稳定态的BCF SS值。
[0109] 较佳地，该方法还可以进一步包括：
[0110] 在吸收阶段，计算上一次取样周期时受试物在目标水生蔬菜内的浓度与当前取样 周期时受试物在目标水生蔬菜内的浓度之差，将该差值除以取样周期长度，得到目标水生 蔬菜吸收受试物速率。
[0111] 本步骤中，通过将蔬菜暴露于含有受试物的受试溶液中，依据前后两次取样周期 的受试物在目标水生蔬菜内的浓度，可以得到目标水生蔬菜吸收受试物速率，即目标水生 蔬菜组织内受试物浓度增加的速率。
[0112] 较佳地，作为另一可选实施例，该方法还可以进一步包括：
[0113] 在清除阶段，计算上一次取样周期时受试物在目标水生蔬菜内的浓度与当前取样 周期时受试物在目标水生蔬菜内的浓度之差，将该差值除以取样周期长度，得到目标水生 蔬菜清除受试物速率。
[0114] 本步骤中，目标水生蔬菜清除受试物速率K2是指目标水生蔬菜从含有受试物的 受试溶液中转移到不含有受试物的介质中，目标水生蔬菜组织内受试物浓度降低的速率， 可以通过绘制在坐标轴上的清除曲线（即在坐标轴上描绘出的目标水生蔬菜中受试物浓 度对时间的曲线）来确定。
[0115] 本发明实施例中，作为一可选实施例，目标水生蔬菜吸收受试物速率K1也可根据 给定的K2值和来自于绘制在坐标轴上的吸收曲线的C v值计算获得。
[0116] 如前所述，对于80%或95%稳定态的80?%值，可以通过估算1(2值，进而根据1(2 和Pow或水溶性⑶的经验关系式估计达到80%或95%稳定态的BCF SS值所需的时间，从 而为测试时长提供参考。
[0117] 作为可选实施例，可以依据下面的经验关系式得到K2的估算值：
[0118] lg K2 = -〇. 4141gP