种物由回收自位于巴西圣保罗PacaembCi州的甘鹿作物的玉米短体线虫 (Pratylenchus zeae)的纯亚群制备。该纯亚群由温室中的粘土容器内的玉米植物（Zea mays L.)"DKB 390 PRO"繁殖。该亚群通过采用SANTOS等（2005)创造的二分法钥匙 (dicotomic key)基于临时装片中固定的成年雌性的形貌特征于先前鉴定。
[0089]将表1中所表示的组合物的3mL样品均匀施加在土壤上以及甘蔗植物的根的附近。 之后，所述甘蔗植物的根用包含不同发育阶段的玉米短体线虫的IOmL悬液接种，这之后用 土壤将根覆盖。重复进行5次。
[0090] 表 1
[0091]
[0092] 15天和30天后，对该处理的植物毒性进行评价。没有在甘蔗植物上观察到植物毒 性症状。
[0093]在施用90天后检测甘蔗植物的枝高和植物枝条鲜物质。结果示于表2中。
[0094]表2.
[0096]在45天和90天之后对所述甘蔗植物的10克根部样品中不同发育阶段中的玉米短 体线虫的数量计数。结果列于下表3。
[0097] 表3.
[0098]
[0099]能够看到，与对照组相比，用硫双威对甘蔗植物进行的处理显著降低了线虫数量。 与对照组相比，在用硫双威进行处理后，甘蔗植物表现出显著更强的枝条生长。
[0100]例2-甘蔗-玉米短体线虫
[0101 ]线虫接种物由回收自位于巴西圣保罗PacaembCi州的甘鹿作物的玉米短体线虫 (Pratylenchus zeae)的纯亚群制备。该纯亚群由温室中的粘土容器内的玉米植物（Zea mays L.)"DKB 390 PRO"繁殖。该亚群通过采用SANTOS等（2005)创造的二分法钥匙 (dicotomic key)基于临时装片中固定的成年雌性的形貌特征于先前鉴定。
[0102] 将表4中所表示的组合物的3mL样品均匀施加在土壤上以及植物的根的附近。之 后，在不同发育阶段所述甘蔗植物的根用包含玉米短体线虫的IOmL悬液接种，这之后用土 壤将根覆盖。重复进行5次。
[0103] 表4.
[0105] 在接种后135天对所述植物的根中的线虫卵的数量计数。结果列于下表5。 1 表5.
[0108]能够看到，与对照组相比，用硫双威对甘蔗植物进行的处理显著降低了线虫卵数 量。
[0109]例3-甘蔗-爪哇根结线虫和玉米短体线虫
[0110]线虫接种物由保留自温室中的粘土容器中的大豆植物(Glycine max L.)的爪唾 根结线虫(Meloidogyne javanica)的纯亚群制备。该亚群基于TAYLOR和NETSCHER( 1974)制 备的会阴表样的形貌特点，基于雄性的口区域的形貌(EISENBACK等，1981 )，并且基于通过 ESffiNSHADE和TRIANTAPHYLL0U(1990)的技术采用传统垂直电泳系统，即伯乐公司（BIORAD) 的 Mini Protean II 获得的酯酶的同工酶表型 ，于先前被鉴定。
[0111] 将以下表6中汇总的组合物的3mL样品以表中示出的比例均匀施加在土壤上以及 根的附近。这之后，将甘蔗植物的根用包含5000枚卵（玉米短体线虫和爪哇根结线虫)和二 期幼年型爪哇根结线虫的IOmL的悬液接种，之后根用土壤覆盖。重复进行5次。另外，根据分 析，爪哇根结线虫和玉米短体线虫也在提取的根的悬液中被发现。
[0112] 表6.
[0114] 15天和30天后，对该处理的植物毒性进行评价。没有在甘蔗植物上观察到植物毒 性症状。
[0115] 在施用后100天检测甘鹿植物的枝高。结果列于下表7。
[0116] 表7.
[0117]
[0118] 在施用后100天对根中不同发育阶段中的爪哇根结线虫的数量、10克根部中的不 同发育阶段中的爪哇根结线虫的数量、10克根部中的不同发育阶段中的玉米短体线虫的数 量、根中线虫卵数量进行计数。结果列于下表8。
[0119] 表8.
[0122] 能够看到，与对照组相比，用硫双威对甘蔗植物进行的处理显著降低了线虫数量。 与对照组相比，在用硫双威进行处理后，甘蔗植物表现出显著更强的枝条生长。
[0123] 例4-大豆-爪哇根结线虫
[0124] 线虫接种物由保留自温室中的粘土容器中的番前（Solanum lycopersicom L.)的 爪唾根结线虫（Meloidogyne javanica)的纯亚群制备。该亚群基于TAYLOR和NETSCHER (1974)制备的会阴表样的形貌特点，基于雄性的口区域的形貌(EISENBACK等，1981 )，并且 基于通过ESBENSHADE和TRIANTAPHYLLOU (1990)的技术采用传统垂直电泳系统，即伯乐公司 (BIO-RAD)的Mini Protean II获得的酯酶的同工酶表型，于先前被鉴定。
[0125] 从所述番茄的根部制备包含卵和二期幼年型(J2)的悬液。将IOmL的悬液与茄子一 同接种持续22天。这之后，将茄子移植至罐，并保持在温室中。100天后，将所述茄子的根清 洗并在混合器中用〇 . 5%的次氯酸钠碾碎。然后，使所述悬液通过500(0.025mm开口）上的 200目（0.074_开口）的筛网。将保留在500目网筛上的卵和幼年型收集并清洗。
[0126] 用表9所示的组合物对大豆种子进行处理。然后，种子用包含5000枚卵和二期幼年 型爪哇根结线虫的3mL悬液接种。
[0127] 表9.
[0129] 播种19天后，对该处理的植物毒性进行评价。没有在大豆植物上观察到植物毒性 症状。
[0130] 在播种后52天对大豆植物的10克的根上的虫癭的数量计数。结果列于下表10。
[0131]表10.
[0133] 在播种52天后对10克大豆根中的卵和爪哇根结线虫的数量进行计数。结果列于下 表11。
[0134] 表11.
[0136] 在施用52天和90天后检测大豆植物的根长。结果列于下表12。
[0137] 表12.
[0138]
[0139] 能够看到，与对照组相比，用硫双威对大豆植物进行的处理显著降低了线虫数量。 与对照组相比，在用硫双威进行处理后，大豆植物表现出显著更强的根生长。
[0140] 例5-咖啡-短尾短体线虫
[0141] 线虫接种物由保留自温室中的粘土容器中的大豆植物(Glycine max L.)的短尾 短体线虫(Pratylenchus brachyurus)的纯亚群制备。该亚群基于会阴表样的形貌特点、基 于口区域的形貌、并且基于酯酶的同工酶表型，于先前被鉴定。
[0142] 将以下表13中汇总的组合物的3mL样品以表中示出的施用率均匀施加在土壤上以 及根的附近。之后，所述咖啡幼株植物的根用包含不同发育阶段的短尾短体线虫的IOmL悬 液接种，这之后用土壤将根覆盖。重复进行5次。
[0143] 表13.
[0145] 15天和30天后，对该处理的植物毒性进行评价。没有在咖啡植物上观察到植物毒 性症状。
[0146] 在施用52天和90天后检测咖啡植物的根长。结果列于下表14。
[0147] 表14.
[0148]
[0149] 在施用后52天和90天对咖啡植物根部中的不同发育阶段中的短尾短体线虫的数 量计数。结果列于下表15。
[0150] 表15.
[0152] 能够看到，与对照组相比，用硫双威对咖啡植物进行的处理显著降低了线虫数量。 与对照组相比，在用硫双威进行处理后，咖啡植物表现出显著更强的根生长。
[0153] 例6-咖啡-短小根结线虫
[0154] 线虫接种物由温室中的粘土容器中的番前(Solanum lycopersicom L.)中的短小 根结线虫(Meloidogyne exigua)的纯亚群制备。该亚群基于会阴表样的形貌特点、基于口 区域的形貌、并且基于酯酶的同工酶表型，于先前被鉴定。
[0155] 将表16中汇总的组合物的3mL样品以表中示出的施用率均匀施加在土壤上以及根 的附近。之后，所述咖啡幼株植物的根用包含不同发育阶段的短小根结线虫的IOmL悬液接 种，这之后用土壤将根覆盖。重复进行5次。
[0156] 表16.
[0158] 15天和30天后，对该处理的植物毒性进行评价。没有在咖啡植物上观察到植物毒 性症状。
[0159] 在施用后100天检测咖啡植物的枝高。结果列于下表17。
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