抗svcv单克隆抗体4f9及其制备与应用的利记博彩app
【专利摘要】本申请公开了一种抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体4F9，及其制备与应用。该单克隆抗体由杂交瘤细胞株SVCV-4F9分泌，该细胞株的保藏号为CCTCC?No：C201365。该杂交瘤细胞株SVCV-4F9能能稳定产生单克隆抗体4F9，该抗体具有抗体效价高、灵敏度高、特异性强、与天然抗原的亲和力强等优点。本申请还提供了一种包含该单克隆抗体的快速检测试纸条及其试剂盒，其采用胶体金免疫层析检测技术，具有较好的灵敏度、特异性、稳定性、重复性和再现性等特点，同时该试纸条和试剂盒使用简单方便、检测速度快、检测结果直观且检测成本低，可满足食品安全、屠宰、检测机构等的检测要求，特别适用于现场检测。
【专利说明】抗SVCV单克隆抗体4F9及其制备与应用
【技术领域】
[0001]本申请涉及鲤春病毒血症病毒检测领域，特别涉及一种抗鲤春病毒血症病毒(SVCV)单克隆抗体4F9及其制备与应用。
【背景技术】
[0002]鲤春病毒血症(Spring viraemia of carp, SVC)是严重影响鲤科鱼类的一种严重的传染性疾病，过去主要流行于欧洲一些国家(奥地利、比利时、法国、德过、英国、匈牙利、意大利、西班牙和前斯洛伐克、苏联和南斯拉夫的部分地区)，并对这些国家的养殖鲤鱼造成严重的经济损失。病鱼体色发黑、呼吸困难、运动失调(侧游，顺水漂流或游动异常)、腹部膨大、眼球突出、肛门红肿、皮肤和鳃渗血。
[0003]该病的病原为鲤春病毒血症病毒(Spring viraemia of carp virus, SVCV),属于弹状病毒科水疱病毒属，含有I个线状、反义、单链的RNA，包含有5个结构蛋白，分别为核蛋白(N)、磷蛋白(P)、膜蛋白(M)、糖蛋白(G)和依赖RNA的RNA聚合酶(L-蛋白)。
[0004]鉴于SVC所引起的巨大危害，已被列入世界动物卫生组织(OIE)疫病名录，同时在我国，也将其列为一类动物疫病。
[0005]关于SVC检测和确诊方法目前主要根据OIE所推荐的标准进行。对SVC的病原学诊断需要用电镜镜检、免疫荧光观察组织切片或分离病原等方法进行。OIE推荐用FHM和EPC细胞系来分离病毒。然后用血清学方法如中和实验、免疫荧光或ELISA技术或核酸检测方法如聚合酶链式反应(PCR)可对分离出的病毒进行鉴定。CN102876810A采用RT-PCR的方法检测鲤春病毒血症病毒；CN102876811A专利也公布了一种RT-LAMP检测试剂盒。以上检查方法均需要一定的条件和技术，或因为需要特殊仪器，或因为费用昂贵等，其现场检测推广及多次重复追踪复查受到限制，并且采用灭活毒株免疫动物获得免疫血清，但这种方法需要增殖大量的病毒并对其纯化,生产血清成本高,过程复杂，限制了抗血清的大量生产。
[0006]20世纪80年代兴起的胶体金免疫层析检测，基于血清学检测原理，操作简单快捷、结果清晰易于判断、无需复杂的实验技能和特殊设备，特别适于现场检测。因此，研究开发适合于快速检测用的抗SVCV单克隆抗体具有重要意义。
【发明内容】
[0007]本申请的一个目的是提供一种适用于快速检测的抗鲤春病毒血症病毒(SVCV)单克隆抗体。
[0008]本申请的另一个目的是提供该单克隆抗体在鲤春病毒血症病毒检测中的应用，特别的提供了一种特异性高、灵敏度高的鲤春病毒血症病毒(SVCV)快速检测试纸条及其试剂盒。
[0009]为了实现上述目的，本申请采用了以下技术方案:
[0010]本申请公开了一种可产生抗鲤春病毒血症病毒(SVCV)单克隆抗体的杂交瘤细胞株SVCV-4F9，该细胞株已于2013年6月6日保藏在中国典型培养物保藏中心(CCTCC)，保藏号为 CCTCC C201365。
[0011]本申请公开了一种由上述保藏号CCTCC C201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9产生的抗SVCV单克隆抗体，在本申请中也将该抗体称为抗SVCV单克隆抗体4F9(或简称为单克隆抗体4F9)。
[0012]本申请同时公开了保藏号CCTCC C201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9在制备SVCV检测试剂或设备中的应用。
[0013]本申请还公开了上述抗SVCV单克隆抗体4F9在制备SVCV检测试剂或设备中的应用。
[0014]本申请提供了一种SVCV快速检测试纸条，该试纸条包含上述抗SVCV单克隆抗体4F9。
[0015]进一步的，上述SVCV快速检测试纸条中，抗SVCV单克隆抗体4F9包附胶体金。
[0016]本申请还提供了一种SVCV检测试剂盒，该试剂盒包括上述SVCV快速检测试纸条，例如可由上述SVCV快速检测试纸条组装而成。
[0017]本申请还提供了上述SVCV快速检测试纸条或SVCV检测试剂盒在SVCV检测中的应用。
[0018]此外，本申请还提供了一种用于制备上述保藏号为CCTCC C201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9的蛋白，该蛋白的氨基酸序列包含SEQ ID N0.1所示的序列。
[0019]由于采用了上述技术方案，本申请的有益效果在于:
[0020]本申请提供的杂交瘤细胞株SVCV-4F9能稳定产生抗SVCV单克隆抗体4F9，该抗体特异性好、效价高，可应用于SVCV快速检测领域。
[0021]同时，本申请提供了一种SVCV快速检测试纸条及其试剂盒，将胶体金检测技术应用到SVCV的检测领域，该检测试纸条具有特异性强、敏感性高、稳定性好，同时具备可重复性和再现性等优点，可以快速、准确、稳定检测鲤春病毒血症病毒，且价格低廉。采用该试纸条检测速度快，整个检测过程只需要15-20分钟，操作简单，无需特殊仪器，肉眼观测结果，结果稳定，能满足食品安全、屠宰、检测机构的检测要求，更方便于现场检测。
【专利附图】
【附图说明】
[0022]图1为本申请【具体实施方式】中的一种鲤春病毒血症病毒快速检测试纸条的结构示意图；
[0023]图2为本申请【具体实施方式】中的实施例1中融合蛋白的原核表达定位分析结果图(12h)；
[0024]图3为本申请【具体实施方式】中的实施例1中融合蛋白的原核表达纯化分析结果图(12h)。
[0025]保藏信息
[0026]培养物名称:杂交瘤细胞株SVCV-4F9
[0027]保藏日期:2013年6月6日
[0028]保藏单位:湖北省武汉市武昌珞珈山武汉大学保藏中心，即中国典型培养物保藏中心(CCTCC)[0029]保藏编号:CCTCCC201365【具体实施方式】
[0030]本申请采用序列为SEQ ID N0.1所示的蛋白SVCV glycoprotein作为免疫原，制备得到了杂交瘤细胞株SVCV-4F9。该杂交瘤细胞株细胞染色体稳定，能稳定、高表达的分泌出具有高抗原亲和力、高特异性、效价高的抗SVCV单克隆抗体4F9。具体的，该单抗可由上述杂交瘤细胞株通过注射Balb/c小鼠腹腔，诱生腹水,通过辛酸-硫酸铵纯化而大量获得。该抗SVCV单克隆抗体4F9具有良好的抗原性，与天然抗原的亲和力强，且特异性好、抗体效价高，可以作为SVCV多种检测方法中的重要试剂原料。该抗SVCV单克隆抗体4F9特别适用于SVCV快速检测领域，尤其适用于SVCV胶体金免疫层析检测法。 [0031]由抗SVCV单克隆抗体4F9制备得到的SVCV胶体金快速检测试纸条，特异性强、敏感性高、稳定性好，同时具备可重复性和再现性等优点。该试纸条可进一步与其他部件构成SVCV检测试剂盒，其SVCV快速检测试纸条则是该试剂盒的核心。本申请提供的试纸条及其试剂盒生产和检测成本低。使用该试纸条不需另配其它仪器、设备和试剂，节省大量仪器、设备和附加试剂费用，专业和非专业人士均可随时随地进行现场检测，节省检测成本。其应用范围广，便于普遍推广，而且方便携带和保存，能满足不同层次人员的需要，包括专业化验、海关检疫、卫生防疫、质量监测、畜产品加工、集约化养殖和个体养殖等，具有广阔的市场前景和较好的经济、社会效益。同时，该试纸条和试剂盒可快速检测，10-15分钟即可完成检测。由于不需特殊仪器设备，且操作简单，一步完成，无需专业人员操作，因此特别适用于现场操作。
[0032]本申请中的单克隆抗体4F9除了应用于上述胶体金免疫层析检测试纸条外，还可以用于其他SVCV检测试剂盒、试剂或设备中。本领域技术人员可以理解，将本申请所述的单克隆抗体4F9直接或间接结合其他信号基团(如磁性微球、辣根过氧化酶等)，或将本申请所述的单克隆抗体4F9作为包被抗体(例如ELISA)，则可用于其他形式的SVCV检测试剂或设备。故本申请所制备得到的杂交瘤细胞及其分泌的抗体可广泛适用于制备SVCV检测试剂或设备。
[0033]此外，本申请中所采用的鲤春病毒血症病毒毒株为SVCV-2004714，由深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心提供。
[0034]下面通过【具体实施方式】结合附图对本申请作进一步详细说明。
[0035]实施例一:鲤春病毒血症病毒膜蛋白的表达
[0036]根据NCBI公布的登录号为AY527273的序列，选取鲤春病毒血症病毒膜蛋白glycoprotein [Spring viraemia of carp virus]为鲤春病毒血症病毒抗原检测位点，利用抗原决定簇分析软件分析整个序列，最后选择一段免疫原性强、特异性高的蛋白作为免疫原，该蛋白的氨基酸序列为SEQ ID N0.1，合成蛋白对应的DNA序列为SEQ ID N0.2。将这段DNA (序列如SEQ ID N0.2所示)插入原核表达载体PET28e中，测序鉴定。用IPTG诱导表达，分离纯化得到蛋白SVCV glycoprotein,即可将其作为免疫原用于免疫小鼠制备抗体。具体表达纯化过程如下:
[0037]( I)融合蛋白的原核表达
[0038]①培养[0039]挑取单菌落于试管中(5mL LB培养基,50ug/mL氨节青霉素)37 °C, 220rpm/min过
夜培养。
[0040]将培养的菌液按1:100比例接种于200ml LB培养基中，添加50ug/mL氨苄青霉素，37 0C，180rpm/min 扩大培养。
[0041]当OD值达到0.6左右时，添加终浓度为0.6mM的IPTG，37°C，120rpm/min诱导12h。
[0042]收集菌体并用PBS缓冲液悬浮。
[0043]②超声破碎菌体
[0044]冰浴中超声破碎菌体，功率200W，每200mL培养基进行99次循环(超声3S，暂停5S为一个循环)。[0045]超声完毕，8000rpm/min,4°C,离心15min,收集上清和沉淀。
[0046]将离心后沉淀采用溶解液(PBS，8M尿素)悬浮，室温孵育3h，然后6000rpm/min，4°C，离心15min，上清以备纯化。
[0047]③镍琼脂糖亲和层析
[0048]用10倍柱床体积的Binding buffer清洗平衡柱子,流速60ml/h。
[0049]样品(溶解液上清)上柱，流速为45ml/h，收集穿透液。
[0050]10倍柱床体积的Binding buffer清洗柱子，流速60ml/h。
[0051]Eulte Buffer洗脱，流速45ml/h,收集洗脱液。
[0052]将纯化后的蛋白置于透析袋中，在PBS缓冲液(pH=8.0)中缓慢透析12h，收集透析后的样品，SDS-PAGE分析并保存备用。
[0053]注:BindingBuffer (PBS，8M 尿素 15mM 咪唑，300mM NaCl, 0.5%TritonX-100,pH=8.0) Eulte Buffer (PBS，8M 尿素，500mM 咪唑，ρΗ=8.0)
[0054]( 2 )融合蛋白的表达及定位
[0055]通过对样品进行SDS-PAGE分析，电泳显示在相应位置(33kD)出现明显的新生条带，表明融合蛋白在诱导12h后成功得到了表达,见图2,图2中,M为蛋白marker, I所示为诱导前样品，2所示为诱导后样品，3所示为超声后上清，4所示为超声后沉淀，其条件为浓缩胶80V, 15分钟；分离胶150V，60分钟。
[0056](3)融合蛋白的纯化
[0057]融合蛋白经过镍琼脂糖亲和层析法进行纯化，SDS-PAGE电泳分析在相应位置(33kD)均出现明显条带，表明融合蛋白12小时后成功得到了纯化，见图3。图3中，M为蛋白marker，I所示为目的蛋白，其条件为浓缩胶80V，15分钟；分离胶150V，60分钟。
[0058]实施例二:抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体的制备:
[0059](I)共选取8周龄BALB/C小鼠5只，免疫程序如下:
[0060]首免:以SVCV glycoprotein 作为免疫原，以 Quick Antibody-Mouse5ff 作为免疫佐剂，免疫剂量为10 μ g/只(10 μ g免疫原+10 μ LQuick Antibody-Mouse5ff+生理盐水80ul)，大腿肌肉注射。
[0061]加强免疫:于首免后第21天进行，免疫剂量为10 μ g/只(10 μ g免疫原+10 μ LQuick Antibody-Mouse5ff+生理盐水80ul),共免疫2次，第35天断尾采血分离血清，用间接ELISA法检测抗SVCV悬液的血清抗体效价。若效价达到1:5000,即可用于细胞融合。[0062]选取ELISA法检测抗体较高的免疫小鼠，眶下窦采血，分离血清。脱颈致死小鼠；[0063]无菌手术取出脾脏制备脾细胞，并与NSO细胞在50%PEG作用下进行细胞融合；
[0064]将融合后的细胞悬液加到96孔细胞培养板上，用HAT培养基进行选择性培养。融合后的细胞置37°C，5%C02培养箱中培养；
[0065]用间接ELISA法以0.5 μ g/孔的蛋白的量包被酶标板进行阳性筛选。P/N大于2.1时即为阳性。对强阳性、细胞生长旺盛的孔进行3次有限稀释克隆化，得到保藏号为CCTCCC201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9。
[0066](2)单抗的大量制备:
[0067]本例中采用腹水法大量制备单克隆抗体。将杂交瘤细胞株SVCV-4F9扩大培养，待细胞浓度达5 X IO5个/mL时停止换液，直至细胞全部死亡，收集培养液，测定其ELISA效价；
[0068]给腹腔注射液体石蜡10天后的小鼠腹腔注射克隆化细胞株IO7个细胞，7天后抽取腹水，用SVCV病毒悬液包被酶标板测其ELISA效价。
[0069](3)单抗的纯化:
[0070]采用辛酸一硫酸铵法进行单抗的纯化。将20mL腹水加入离心管中，于40C 12000rpmX15min，将上清转移至另一溶器中；
[0071]向上清中加入4倍血清体积的0.06M pH4.8的醋酸缓冲液，室温边加边搅拌；
[0072]向上述混合物中加入适量的辛酸(33 μ L/mL)，滴加时要缓慢，室温滴加，边滴加边搅拌；辛酸滴加完后，室温搅拌30min ；
[0073]于4°C离心，12000rpmX 30min,取上清，用滤纸过滤；
[0074]向滤液中加入≤45%的饱和硫酸铵溶液(SAS)，室温搅拌30min，4°C静置2h或过夜；
[0075]于4°C离心 12000rpmX 30min,弃上清，沉淀用适量 0.01mol/L PH7.4PBS 重悬,用
0.01mol/L PH7.4PBS 于 4°C透析 24h，其间换液 4 次；
[0076]将透析物于4°C离心12000rpmX30min，收集上清分装于EP管中，用核酸蛋白测定仪测定蛋白含量，稀释至10mg/mL，置于_20°C保存。
[0077](4)单克隆抗体特异性检测:
[0078]用纯化的单克隆抗体4F9分别与其他鱼类病毒(锦鲤疱疹病毒(KHV)、传染性造血组织坏死病毒(IHNV)、病毒性出血性败血病毒(VHSV)、传染性胰脏坏死病毒(IPNV)、真鲷虹彩病毒(RSIV)、草鱼出血病病毒(GCHV)和流行性造血器官坏死病毒(EHNV))包被的ELISA板反应，鉴定单克隆抗体的特异性。
[0079]实施例三:胶体金快速检测试纸条的制备
[0080]( I)胶体金颗粒的制备
[0081]取1%氯金酸溶液lml，加99ml超纯水成终浓度0.01%的氯金酸溶液，加热沸腾后，取1%柠檬酸三钠1.6ml 一次性迅速加入煮沸的氯金酸溶液中，继续加热至溶液由淡黄色转为蓝黑色最终变为亮红色，颜色稳定后继续加热5min，室温冷却，补充失水至原体积。
[0082](2)胶体金-抗体复合物试剂的制备与纯化:
[0083]取100ml胶体金溶胶,用0.lmol/L碳酸钾调节金溶胶至所需pH,大约调到pH8.0 ；
[0084]迅速向金溶胶中加入最佳标记量的抗SVCV单克隆抗体4F9 (10ug/ml)搅拌2_3分钟充分混合，室温下反应10分钟；
[0085] 迅速加入IOml 10%牛血清白蛋白(BSA)溶液，充分混合，室温下反应10分钟；
[0086]取胶体金溶液至离心管中于13000转4°C冷冻离心机离心30分钟，小心吸去上清液(切忌倾倒)；
[0087]将沉淀悬浮于1/10体积含0.5mg/ml BSA的磷酸缓冲液中，置4°C保存。
[0088](3)固相硝酸纤维素(NC)膜的活化
[0089]裁取20mmX3-4mm的NC膜，于0.lmol/L的碳二亚胺溶液中浸泡，15min后取出，室温风干8min。抗SVCV多克隆抗体(2mg/ml)包被于固相硝酸纤维素膜的观察结果的测试反应区，定义为检测线(T)，包被羊抗鼠IgG(2mg/ml)于质控区，定义为质控线(C)，且两者间距4~10mm,优选6臟。
[0090]其中，该抗SVCV多克隆抗体可通过以下方法制备得到:
[0091]将实施例1中制备得到的SVCV glycoprotein作为免疫原，以QuickAntibody-Rabbit5W作为免疫佐剂，免疫剂量为30 μ g/只(30 μ g免疫原+50 μ LQuickAntibody-Rabbit5W)，再用生理盐水补充至lOOul，每针次lOOul，大腿肌肉注射免疫家兔，首免后第21天用同样的方法进行加强免疫，共免疫2次，免疫后第35天耳静脉采血，分离血清，用表达蛋白包被的ELISA板检测抗体效价，如果具有较高的抗体滴度，通过颈动脉放血，收集全血，分离血清。用辛酸硫酸铵法提取IgG，用核酸蛋白测定仪测定蛋白含量，将其稀释至10mg/mL，置于_80°C保存备用。
[0092]兔抗血清经饱和硫酸铵盐粗提,透析,再依次过SephadexG25和DEAE纤维素柱进一步提纯，并将收集的蛋白质于透析袋中。置蔗糖或聚乙二醇中浓缩，紫外分光光度计测其280nm、260nm波长处OD值，以公式计算蛋白含量后_20°C保存备用。
[0093]经过I次初免，I次加强免疫后，兔抗血清效价可达1:30000以上，具有很高的抗血清效价。
[0094]其中，多克隆抗体动物种属来源应为非小鼠来源，可为兔、山羊、绵羊、人、猪、马、牛，制备多克隆的方法可以进行简单替换。
[0095](4)胶体金结合垫的制备:
[0096]取40 μ L的胶体金-抗体复合物试剂用金标稀释液进行3倍稀释，裁取7mmX IOcm的玻璃纤维素膜，浸泡于上述稀释后的胶体金-抗体复合物溶液中，再于室温洁净条件真空干燥备用，所述金标稀释液为含0.01M PBS,0.5% (质量百分含量)BSA、0.2%Twen_20 (体积百分含量)、2.5%蔗糖(质量百分含量)的缓冲液。
[0097](5)样品垫的制备:
[0098]截取1.1cmX IOcm的玻璃纤维素膜，将其均匀浸泡于如下溶液中lOmin，再在室温洁净条件真空干燥备用，所述溶液为含0.01M PBS,0.5% (质量百分含量)BSA、0.2%Twen-20(体积百分含量)的缓冲液。
[0099](6)试纸条的组装
[0100]本例中的胶体金快速检测试纸条由样品垫、胶体金结合垫、硝酸纤维素膜及吸水纸4个部分组成。样品垫和胶体金结合垫用玻璃纤维素膜，底板为双面胶聚乙烯塑料板。顺序装配，裁成宽度为3_的检测试纸条。本例中试纸条的结构示意图如图1所示，该胶体金快速检测试纸条，包括样品垫1、胶体金结合垫2、检测线(T)3、固相硝酸纤维素膜4、质控线(C)5、吸水纸6以及底板7。其中底板7 —端粘贴样品垫1，另一端粘贴吸水纸6，胶体金结合垫2是由胶体金标记的抗SVCV单克隆抗体复合物结合在玻璃纤维膜，其一端置于样品垫I下，另一端紧密连接固相硝酸纤维素膜4 ;检测线(T)3为抗SVCV多克隆抗体；质控线(C)5为羊抗鼠IgG抗体；检测线(Τ)3和质控线(C)5位于固相硝酸纤维素膜底板4的中间；吸水纸6连接固相硝酸纤维素膜4。
[0101](7)待测样品的前处理
[0102]当所述样品为鱼类组织时，病毒释放后，样品前处理方法为:
[0103]I)取样方式:表面健康的鱼:取肾、脾和脑；有临床症状的鱼:体长< 4cm取全鱼；体长在4~6cm之间，取包括肾脏和脑在内的所有脏器；体长> 6cm，取肾、脾和脑；
[0104]2)取组织6~7g，加入适量已灭菌石英砂，充分研磨，然后加入50mL M199培养基(含10%FBS和100IU/mL青霉素和100 μ g/mL双氢链霉素的双抗)，转入50ml离心管，4°C孵育过夜。最后取孵育后的细胞悬液作为检测样品。
[0105](8)检测方法与判断标准
[0106]将待检测样品滴加到试纸的样品垫上,水平放置,反应lOmin。
[0107]判断标准:若只在质控线C出现红色，则表示为阴性；若在试纸的质控线、检测线均出现红色，则判定为阳性。
[0108]实施例四:胶体金快速检测试纸条的检测试验
[0109](I)样品中鲤春病毒血症病毒的检测
[0110]抗体标记在胶体金颗粒上，当加入样本后，金标抗体和样本一起向硝酸纤维素膜方向扩散，并最终渗入吸水纸端，扩散过程中待检的SVCV可与胶体金标记的抗SVCV单克隆抗体相结合。当样本中的SVCV超过检测限时，检测线(T)显红色，多余的金标单克隆抗体与质控线(C)的羊抗鼠IgG 二抗相结合显色，C线显红色，形成2条红色印记为阳性；反之，待测样品中无SVCV时，胶体金标记抗体在向硝酸纤维素膜方向扩散的过程中，不能与抗SVCV多克隆抗体相结合，不能形成固相多克隆抗体一抗原一胶体金标记抗体复合物，因此T线不显色，胶体金标记抗体只能与羊抗鼠IgG 二抗结合，C线显红色，记为阴性；如果硝酸纤维素膜没有显示红色标记或C线不显色，则表明试纸条失效。
[0111](2)试纸条的敏感性试验:分别将已知病毒阳性细胞培养液10份经过倍比稀释，分别用试纸条进行检测，并且与病毒分离试验进行敏感性比较，结果表明试纸条的灵敏度为 IOOTCId50, CV 值小于 15%。
[0112](3)试纸条的特异性试验之阻断试验:检测SVCV时显示为阳性，当将狗鱼弹状病毒(PFRV)、牙鲆弹状病毒(HRV)、传染性胰脏坏死病毒(IPNV)、锦鲤疱疹病毒(KHV)、传染性造血组织坏死病毒(IHNV)、病毒性出血性败血病毒(VHSV)、真鲷虹彩病毒(RSIV)、草鱼出血病病毒(GCHV)和流行性造血器官坏死病毒(EHNV)等几种病毒阳性细胞培养液分别加入试纸的样品垫上，静置反应10min后，检测结果均为阴性，说明本试纸条特异性好，结果见表1，其中“ + ”表示阳性，表示阴性。
[0113]表1.试纸的特异性试验
[0114]
【权利要求】
1.保藏号为CCTCCC201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9。
2.一种抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体，其特征在于:所述抗体由保藏号CCTCCC201365的杂交瘤细胞株SVCV-4F9产生。
3.根据权利要求1所述的杂交瘤细胞株SVCV-4F9在制备鲤春病毒血症病毒检测试剂或设备中的应用。
4.如权利要求2所述的抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体在制备鲤春病毒血症病毒检测试剂或设备中的应用。
5.一种鲤春病毒血症病毒快速检测试纸条，其特征在于:所述试纸条包含权利要求2所述的抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体。
6.根据权利要求5所述的鲤春病毒血症病毒快速检测试纸条，其特征在于:所述的抗鲤春病毒血症病毒单克隆抗体包附胶体金。
7.根据权利要求5或6所述的快速检测试纸条在鲤春病毒血症病毒检测中的应用。
8.一种鲤春病毒血症病毒检测试剂盒，其特征在于:该试剂盒包括如权利要求5或6中所述的鲤春病毒血症病毒快速检测试纸条。
9.根据权利要求8所述的试剂盒在鲤春病毒血症病毒检测中的应用。
10.一种用于制备权利要求1所述的杂交瘤细胞株SVCV-4F9的蛋白，其特征在于，所述蛋白的氨基酸序列包含SEQ I`D N0.1所示的序列。
【文档编号】G01N33/569GK103525768SQ201310433446
【公开日】2014年1月22日 申请日期:2013年9月22日 优先权日:2013年9月22日
【发明者】郑晓聪, 钟松清, 何俊强, 谭攀, 贾鹏, 王津津, 史秀杰, 兰文升, 于力, 刘荭, 谢冬霞 申请人:深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心, 深圳市三方圆生物科技有限公司