一种肿瘤疫苗及其制备方法

一种肿瘤疫苗及其制备方法
【专利摘要】本发明提供了一种肿瘤疫苗及其制备方法。从人外周血单核细胞中抽提mRNA，在体外合成cDNA，运用聚合酶链反应技术克隆了含有信号肽的粒巨细胞集落刺激因子cDNA，并与仙台病毒载体进行重组，构建了含粒巨细胞集落刺激因子cDNA的重组仙台病毒载体GM-CSF-SV。采用安全性较高的包装细胞293T对含GM-CSF基因的仙台病毒载体GM-CSF-SV进行包装，产生出具有高滴度且不具有复制能力的重组仙台病毒，感染人肺癌细胞株A549，建立了具有GM-CSF表达活性的基因工程人肺癌细胞，采用60Co照射灭活瘤苗并进行热休克处理，在摸索了不同的照射剂量后，制备了GM-CSF基因修饰人肺癌细胞瘤苗。
【专利说明】
【技术领域】
[0001] 本发明涉及基因工程领域，更具体地，本发明提供了一种肿瘤疫苗及其制备方法。 一种肿瘤疫苗及其制备方法

【背景技术】
[0002] 肺癌是全世界发病率和死亡率最高的恶性肿瘤之一。目前我国就诊的肺癌患者大 多属中晚期，手术切除率仅为60 %左右，术后5年生存率只有约50 %。作为手术、放疗、化 疗后肿瘤治疗的第四种方法，生物治疗在近年发展迅速。免疫治疗是生物治疗的主要组成 部分。肿瘤疫苗是肿瘤特异性的主动免疫治疗，其诱导的机体特异性主动免疫应答，增强机 体抗肿瘤能力的作用在动物试验中取得了肯定，许多肿瘤疫苗已进入临床实验研究，显示 出良好的前景。
[0003] 肺癌细胞瘤苗是把肺癌细胞用放射线灭活后利用其抗原性诱导机体产生抗癌效 应。存在免疫原性弱、有致瘤性等缺点。降低、消除肿瘤细胞致瘤性，尽量保存其抗原性是 研究的重点。自体肺癌细胞瘤苗拥有自体特异的肿瘤抗原，比异体肿瘤细胞瘤苗安全有效， 但不适合广泛临床应用。异体肿瘤细胞瘤苗适合广泛临床应用，但免疫原性较弱，一般在制 备时添加免疫佐剂，如福氏佐剂，病毒，细菌，细胞因子及寡聚脱氧核苷酸等。有些肿瘤疫苗 的已进入临床III期研究。希望在不久的将来，能看到某些肿瘤疫苗的标准治疗方案问世。
[0004] 目前所开展的肿瘤基因治疗中，以肿瘤免疫基因治疗的研究为最多。肿瘤细胞靶 向的细胞因子基因治疗是以主动免疫治疗为基础，即将细胞因子的持续分泌，从而激发机 体产生抗肿瘤免疫反应，达到治疗肿瘤的目的。
[0005] GM-CSF (粒巨细胞集落刺激因子，granulocyte macrophage colony-stimulating factor)是一种主要由巨噬细胞和活化细胞产生的细胞因子，其可通过促进分化成熟树突 状细胞（dendritic cell，DC)、巨噬细胞等抗原呈递细胞分化、成熟和活化进而促进Th、Tc、 NK识别肿瘤相关抗原，在肿瘤部位浸润，引起系统性抗肿瘤反应，杀伤肿瘤的同时还可促进 细胞CD45 T细胞分化成熟及黏附分子B7/BB1的表达，提高其抗原呈递能力。另外还可增 加巨噬细胞主要组织相容性复合物II (MHC II)的表达，提高其抗原呈递能力。这些功能均 提示GM-CSF是一个极具潜力的免疫佐剂。
[0006] GM-CSF基因修饰的肿瘤细胞被放射线灭活后往体内注射，可增加局部炎性反应， 大量多核细胞、巨噬细胞和DC浸润，促进肿瘤抗原呈递，能够诱导强烈的抗肿瘤免疫反应。


【发明内容】

[0007] 本发明提供了一种GM-CSF基因修饰的肿瘤疫苗及其制备方法。
[0008] 为解决上述技术问题，本发明的技术方案是：
[0009] 一种肿瘤疫苗及其制备方法，包括mRNA的抽提及CDNA的合成、PCR扩增GM-CSF基 因、GM-CSF cDNA的克隆、含GM-CSF重组仙台病毒载体的组建、粒巨细胞集落刺激因子重组 仙台病毒包装细胞制备、人肺癌细胞株A549的感染，粒巨细胞集落刺激因子表达活性的基 因工程人肺癌细胞的建立及瘤苗的灭活。具体步骤为：用含粒巨细胞集落刺激因子的重组 仙台病毒上清感染A549,得到粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞，应用6°Co照射 使其灭活并进行热休克处理。该粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤苗可以用于 治疗肺癌。
[0010] 本发明的有益效果是：
[0011] 本项目使用的仙台病毒载体表达蛋白质效率极高，大大超过了现有的各种载体。 作为新一代病毒载体，仙台病毒载体开发了治疗重症肢体缺血、冠心病、癌症等疾病的治疗 制剂以及艾滋病疫苗。
[0012] 本发明使用仙台病毒制备一种肿瘤疫苗及其制备方法，为癌症的治疗提供了一种 新的治疗途径。研究表明，粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤苗治疗肿瘤不仅 在一定程度上克服了以往临床直接应用细胞因子需反复多次且副作用明显的缺点，而且也 取得了较好的疗效。

【具体实施方式】
[0013] 第一步：含信号肽的粒巨细胞集落刺激因子CDNA的制备。
[0014] 1.粒巨细胞集落刺激因子mRNA的制备：
[0015] (1)人外周血淋巴细胞分离液分离出单个核细胞，共约IX 106细胞，经诱导刺激 30小时，使细胞因子基因表达，以备抽提mRNA。
[0016] (2)mRNA的抽提：离心收集细胞，悬浮于L 5mlRNA抽提缓冲液，用注射器反复抽 打匀浆细胞，然后再补加3ml抽提缓冲液，充分混合，离心lOOOcpm 5分钟，收集上清。取 Oligo(dT)-Cellulose Spun Column,混合内容物，350g离心两分钟，弃去柱内液体，取4ml 上清上柱，混匀，弃去液体。然后用高盐缓冲液洗三遍，低盐缓冲液洗二遍，最后用经65°C预 热的洗脱缓冲液洗脱三次，每次用〇. 25ml，收集洗脱液，然后乙醇沉淀。
[0017] 2.粒巨细胞集落刺激因子cDNA的合成：
[0018] (1)引物的设计与合成：根据GenBank中人粒细胞一巨噬细胞集落刺激因子 (GM-CSF)基因序列设计一对引物，上游引物：上游：5' -GCTCAAGCTTCTGGAGGATGTGGCTGC-3 /(内含出11(1111位点）；下游 ：5/-66八〇6八八1'11^(^0：111^八丁66(：1^0：-3'。
[0019] ⑵cDNA的合成：将mRNA溶于20 μ 1 ddH20中，65°C 10分钟，置于冰上备用。在 第一条链反应混合液内加入lmlDTT和热变性的RNA，37°C保湿1小时，最后加1 μ 1 Klenow 酶，37°C 30分钟，65°C 10分钟后再用粉和氯仿抽提，经S印hacryl S-300柱纯化后-20°C保 存。
[0020] 3. PCR扩增GM-CSF基因：取制备好的PBL cDNAlOy 1，加入Y和:T扩增引物 1μ 1、10X反应缓冲液5μ 1、(1ΝΤΡ4μ 1、加水至50μ 1，94°C 5分钟变性。
[0021] 4.GM-CSF cDNA的克隆：为了鉴定PCR产物的准确性，须先将产物克隆入PUC18或 pBluescript DNA，经DNA序列测定确认为GM-CSF cDNA无误后再将这一片段回收，并与表 达载体重组。故将PCR产物溶于TE，用适当的限制性内切酶水解后，与用同样酶水解过的载 体DNA重组，转化TG1后涂于LB/ΑΡ平板，37°C培养过夜。
[0022] 5.质粒DNA小量抽提：将一个单菌落介入含ΑΡ(50μ g/ml)的3ml LB中，37°C培 养过夜。将菌液转移至1. 58ml离心管中，5000rpm离心2分钟，沉淀菌体。用100 μ 1溶液 I悬浮菌体，再加200μ 1溶液II，温和颠倒混勻，置于冰上，待溶液澄清后，加入150μ 1溶 液III，充分混勻。15000rpm 10分钟离心，收集上清，用等体积苯酚/氯仿/异戊醇抽提一 次，加2. 5倍乙醇混匀，沉淀。离心15000rpml0分钟，将沉淀用70%乙醇洗一次，水泵抽干， 最后溶于20 μ 1 TE，用200 μ g/ml RNase处理1小时，-20°C存放。
[0023] 6.质粒DNA的大量抽提：
[0024] (1)接种培养：将一个单菌落接种于3ml LB (含AP)中培养至对数晚期 (0D600 ~ 0. 6)，取500 μ 1接种入50ml含抗菌素的LB中，同样培养至对数晚期，再取15ml 接种入含相应抗菌素的1. 5L LB中，培养过夜。
[0025] (2)质粒抽提：将1. 5L培养物离心5500rpm 10分钟，收集菌体。用吸水纸将离心 管壁上残余液体擦干。将菌体悬浮于30ml溶液I中，置室温中10分钟。加液体II60ml，混 合均匀后置冰上10分钟。加溶液11145ml，置冰浴10分钟后，15000rpm离心10分钟。纱 布过滤后取上清，加等体积异丙醇沉淀，15000rpm离心10分钟，用70 %乙醇洗一次，真空 干燥。将沉淀溶于20mlTE，加入等体积5M LiCl沉淀大分子RNA，在水浴中放置10分钟， 4°C 15000rpm离心10分钟，取上清，用等体积异丙醇沉淀。离心，干燥，溶于5mlTE，加入 RNase 至 200μ g/ml，37°C 30 分钟。加等体积 13% PEG(8000)/1. 5M NaCl 沉淀 DNA，冰浴放 30分钟。离心沉淀，干燥后用TE5ml溶解，用苯酚、苯酚/氯仿/异戊醇、氯仿/异戊醇各抽 提一次。最后加1/10体积3M NaAc及2倍乙醇沉淀。-20°C保存。用时再离心沉淀，溶于 TE〇
[0026] (3) CsCl超离心纯化DNA :如上述碱法抽提的DNA，经LiCl纯化后，用CsCl超速离 心，按lg/ml的用量，加入固体CsCl，30°C溶解。每lOmlDNA加入0· 8ml溴乙锭溶液（10mg/ ml)，CsC溶液的最终密度是1. 55g/ml，折射率1. 3860,溴化乙锭浓度约为704 μ g/ml。室 温8000rpm5分钟，浮在溶液上的是溴化乙锭和蛋白质形成的复合物。将浮渣下的清亮溶液 用注射器吸入用于超滤芯的离心管中，用轻石蜡油补满其余部分，并封口。45000转/分离 心24-48小时（20°C)。离心完毕，在普通光照下可见两条DNA区带，下部区带由闭环质粒 DNA组成，用针头插入此带，吸出至1. 5ml管中，用等体积的经水饱和的正丁醇反复抽提，直 至粉红色从水相和有机相中小时。将水相加3倍TE稀释，加2. 5倍无水乙醇沉淀。离心后 用70%乙醇洗一次，抽干后溶于TE，-20°C保存。
[0027] 7.限制性内切酶反应：根据不同的限制性内切酶选择相匹配的缓冲液。一般取 0. 5-1 μ g DNA，限制性内切酶5U，反应体积20μ 1，37°C保湿1-2小时，用1. 2%琼脂糖凝胶 电泳（含溴化乙锭〇. 5-1 μ g/ml)鉴定酶切结果。
[0028] 8.冻融法回收酶切片段：在紫外灯下将DNA片段从琼脂糖凝胶中切下来，加入 100μ 1 TE，在干冰：乙醇内冻结后置37°C 15分钟，反复三次，15000rpm离心10分钟后吸出 上清，加入1/10体积NaAc和2倍体积乙醇沉淀，离心收集，沉淀经水泵抽干后，溶于TE，即 可进行连接反应。
[0029] 9.DNA连接：将等克分子数的待连接DNA混合，加入5XT4连接酶缓冲液4μ 1，加 水至20μ 1，加入Τ4 DNA连接酶2U，12°C连接过夜，即可用于转化。
[0030] 10.重组DNA的转化：
[0031] (1)感受态细胞制备：将培养过夜的受体菌250 μ 1接种于50 μ 1LB中，37°C 1. 5-3 小时至对数中期，菌液至冰浴10分钟，5000rpm离心5分钟，沉淀菌体用1/2体积经预冷的 100mM MgCl2悬浮，冰浴20分钟，4°C 5000rpm离心5分钟，将菌体悬浮于1/15-1/10体积的 lOOmM CaCl2中，冰浴中放60分钟，即可用于转化。
[0032] (2)重组DNA的转化：将连接过夜的DNA加入lOOul感受态细胞，混匀，冰浴中放 置40分钟，间或轻轻混匀，42 °C 2分钟，涂布于含抗菌素的LB平板上，37 °C培养过夜。
[0033] 10.双链 DNA 测序：
[0034] (1)双链变性：样品DNA约1. 5-2ug，溶于8ulddH20后，加2MNa0H2ul，至室温10分 钟，加3ul3MNaAc中和，再加7ulddH20后，加60ul乙醇沉淀，离心1500rpml0分钟，抽干后 溶于 10ulddH20。
[0035] (2)退火反应：10ul变性模板，加2ul引物，2ul退火缓冲液，65°C 5分钟，缓慢冷 却至室温。
[0036] (3)延伸反应：将退火后的反应液加入lulddH20标记物3ul、T7聚合酶2ul (3U)、 和0. 5ul同位素 （α -32P)标记的dATP，室温反应5分钟。
[0037] (4)终止反应：取上述反应液4. 5ul至预先分装好的4管分别标记有G、A、T、C的终 止混合物中（各2. 5ul)，混匀，37°C 5分钟，加5ul终止液，在电泳上样前样品置75-80°C 2 分钟变性。
[0038] 第二步：含GM-CSF重组仙台病毒载体的组建。
[0039] 将用EcoRI和BamHI酶切，与经同样酶切的GM-CSF相连接，重组载体经酶切鉴定 后有正确的插入片段，命名为GM-CSF-SV。
[0040] 第三步：产生含粒巨细胞集落刺激因子重组仙台病毒的包装细胞的建立。
[0041] 仙台病毒载体是一种很有效的基因转移系统。复制仙台病毒载体经包装细胞包 装，可产生出高滴度的病毒颗粒，并能高效感染靶细胞，通过整合至宿主细胞基因而获得长 期稳定表达。本研究采用安全性较高的包装细胞293T对含GM-CSF基因的仙台病毒载体 GM-CSF-SV进行包装，产生出具有高滴度且不具有复制能力的重组仙台病毒。
[0042] 1.病毒滴度测定
[0043] 病毒滴度测定一 NIN313/TK为指示靶细胞。1X105靶细胞培养1天后，加入经过稀 释的含病毒上清液，并加入Polybrene (8 μ g/ml)。37°C，5 % C02培养3天后，更换培养液， 并加入G418(0. 5mg/ml)进行筛选。10-14天后可见抗G418细胞克隆形成，Giemsa染色后， 计算克隆数确定病毒滴度。
[0044] 2.病毒上清的保存
[0045] 选择病毒滴度大于1 X 104CFU/ml的293T克隆进行扩增培养，收集24小时新鲜上 清，于-70°C冻存备用。
[0046] 第四步：粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞种子细胞库的建立
[0047] L重组仙台病毒感染：
[0048] 当细胞生产成80%融合时，加入GM-CSF-SV重组仙台病毒上清（滴度1 X 106CFU/ ml)，并加入Polybrene至终浓度为8yg/ml，置37°C，5%C02培养24小时，按1 : 2或 1 : 4传代后加入终浓度为0. 5mg/ml的G418,筛选培养约二周后，可见G418抗性细胞呈克 隆化生产。挑取单个克隆至24孔板中继续扩增培养，建立克隆化细胞系。
[0049] 2.基因组DNA的抽提：
[0050] 分别将1X106肿瘤细胞用PBS洗二次，0.25%胰酶消化，800转离心6分钟，力口 0. 9ml细胞裂解液（STE20y 1，20% SDS 15μ 1，蛋白酶K10mg/ml)，37°C保温过夜后，苯酚： 氯仿：异戊醇（25 : 24 : 1)抽提二次，氯仿：异戊醇24 : 1抽提一次，按1/10体积加入 5M NaCl，按2倍体积加入无水乙醇混匀后得DNA沉淀，70%乙醇洗一次后TE溶解备用。
[0051] 3.细胞总RNA抽提：
[0052] 按异硫氰酸胍-酚氯仿一步抽提法抽提细胞总RNA。分别取各种细胞IX 107， PBS洗二次，加 PBS lml后平分移入两支1.5ml Eppendorf管中，1200rpm离心弃上清后， 细胞加溶液D500 μ 1迅速吸打使细胞裂解以抑制RNA酶活性。加50 μ 1 2M NaAc (pH4. 0)， 500 μ 1，DEPC H20饱和的新鲜重蒸酚，200 μ 1氯仿：异戊醇（49 : 1)，混匀后置冰浴15分 钟，12000rpm离心15分钟。吸出含RNA水相，加1倍体积异丙醇混匀，-20°C过夜。12000rpm 琉璃心15分钟，沉淀家150 μ 1溶液D溶解后，加等体积异丙醇，-20°C放置1小时以上， 12000rpm离心15分钟。沉淀用75%乙醇洗一次后用50 μ 1 DEPC水溶解，65°C水浴10分 钟，-70°C冻存备用。
[0053] 4. PCR
[0054] 先94°C 5分钟，接60°C 5分钟，然后进行35个循环反应，最后72°C 10分钟。反应 体系为 30μ 1(10X 反应缓冲液 3μ 1，5'及 3'引物各 1μ l(25pmol)，L 25mmol dNTP 2μ 1， 样品DNA1 μ个，ddH20至30 μ 1)。反应结束后1. 5-2%凝胶水平或6% PAGE垂直凝胶电泳 鉴定。
[0055] 5. RT-PCR
[0056] 逆转录反应：取各细胞总RNA各5 μ 1 (1 μ g/ μ 1)，加入RNA酶抑制剂0. 5 μ 1，随机 引物2μ 1，65°C 5分钟后置冰浴上加入RNA酶抑制剂0·5μ l，5XRuffer4y 1，dNTP 7μ 1， Mo-MuLV逆转录酶1 μ 1后置37°C 1. 5小时。加入终止液后备用。
[0057] PCR反应：各取上述逆转录反应液2μ 1作为模板，按上述PCR方法进行扩增， β -actin引物作为内标准。
[0058] 6. Southern 印迹杂交
[0059] (l)DNA酶解：取各细胞基因组DNA各30yg，溶于17μ1水中，加2μ1 Sac I酶切 缓冲液（10倍），混匀后加入2 μ 1 Sac I (30U/ μ 1)，37°C保温过夜。
[0060] ⑵电泳及转移：上述酶解液5°C加2°C溴酚兰上样缓冲液后，上1 %琼脂糖凝胶电 泳，70V、30mA电泳2-3小时。EB染色观察是否酶解完全。如果酶解不完全，则再加入1 μ 1 Sac I继续保温2-3小时使其完全溶解。然后按上述条件进行电泳，电泳结束后胶浸泡于变 性液（1.5M NaCl，0.5M NaOH)中40分钟，然后再中和液（1M Tris.Cl，1.5M NaCl)中浸泡 30分钟。转移至尼龙膜方法按分子克隆手册进行。
[0061] (3)探针制备：以含细胞因子基因的逆转率病毒载体质粒为模板，按上述PCR方法 制备 Neo 及 GM-CSF 的 DNA 探针，dNTP 用宝灵曼的 PCR DIG labeling mix (No. 1585550)替 代。杂交及检测：采用宝曼灵公司推荐方法进行。
[0062] 7.粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞种子细胞冻存
[0063] 0. 25%胰酶消化粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞种子细胞后，移入 5ml培养液中，以800rpm离心5分钟，将上清吸尽，按1 X 106细胞加 lml冻存液（含30 % 小牛血清及10% DMS0)，移入冻存管中。先放在4°C降温30分钟，然后移入气态的液氮中继 续降温30分钟，最后将冻存管放入液氮生物容器内的液氮保存。
[0064] 第五步：瘤苗的灭活
[0065] 1.细胞收集及洗涤
[0066] 常规扩增培养的粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞，用PBS洗涤两次 后，以0. 25%胰酶消化，收集IX 108细胞至400ml离心瓶中，内含400ml pH7. 4无钙、镁磷酸 缓冲液（PBS)。以lOOOrpm离心10分钟清晰，共清洗三次，最后将PBS上清吸尽，按1 X 107 细胞加 lml冻存液，移入冻存管中。
[0067] 2.6°Co照射粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤苗癌细胞
[0068] 在6°Co治疗仪（THERATRON 780-C)下，按40G、60G、100G辐射强度分别进行照射， 照射后的细胞命名为粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤苗（A549/GM-CSF)。
[0069] 3. A549/GM-CSF 冻存
[0070] 先放在4°C降温30分钟，然后移入气态的液氮中继续降温30分钟，最后将冻存管 放入液氮生物容器内的液氮里保存。
[0071] 4.A549/GM-CSF细胞存活率测定
[0072] 将复苏后的A549/GM-CSF，用5ml完全培养液悬浮。取4滴于载玻片上，用0. 1% 台酚兰（溶于0.9%生理盐水）染色2-3分钟，观察结果。细胞中有深蓝色颗粒浸润即为死 亡细胞，透亮的则为活细胞。4滴样品各随机取视野计数100个细胞，将总细胞数X存活率 即得总活细胞数。
[0073] 第六步：瘤苗的热休克
[0074] 将瘤苗放到65°C温浴lh，热休克处理人肺癌细胞瘤苗。
[0075] 本项目已将GM-CSF基因修饰过的A549肺癌细胞株作为实验瘤苗，经证实其在体 内能持续分泌相应的细胞GM-CSF，提高机体的免疫原性，激活机体的免疫系统进行肿瘤杀 伤，预防肿瘤的复发及转移。国外有类似药物已进入II期临床试验，但国内尚无类似药品 开发。本项目目前已经将编码GM-CSF的基因克隆克隆于仙台病毒载体SV/GM-CSF，用该载 体转录包装细胞PA317,获得病毒颗粒。用含GM-CSF基因的重组仙台病毒转导肺癌细胞株 (A549/-A2阳性），并进行分子生物学分析，确定转导细胞能分泌GM-CSF。实验瘤苗经 6°Co 照射后，转导细胞尚能持续分泌细胞因子长达2?3周，但致瘤性消失，且不含仙台病毒的 复制能力。主要用于肺癌手术后复发、转移或不能手术且缺乏其它治疗方法的晚期肺癌患 者。
[0076] 本生产工艺新颖、技术成熟。该工艺目前已经达到了国际先进水平、工艺简单、易 于工业化、成本大大降低，适合中国的购买需求，产品上市后将填补国内市场的空白。
[0077] 具体实施例1
[0078] 选择我国人群I类抗原频率最多的A549肺癌细胞株为对象。采用GM-CSF-mRNA 的抽提及cDNA的合成、PCR扩增GM-CSF基因、GM-CSF cDNA的克隆、含GM-CSF重组仙台病 毒载体的构建、GM-CSF重组仙台病毒包装细胞制备、人肺癌细胞株A549的感染、 6°Co治疗仪 进行照射灭活肿瘤细胞等细胞生物学、分子生物学、病毒学等技术，获得GM-CSF表达活性 的基因工程人肺癌细胞瘤苗，经常规扩增培养，将瘤苗放到42°C?65°C温浴0. 5h?2h进 行热处理，在6°Co治疗仪进行照射灭活，照射后的细胞命名为GM-CSF基因工程人肺癌细胞 瘤苗（A549/GM-CSF)。
[0079] 具体实施例2
[0080] 粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞经不同剂量的6°Co辐射后在体外均 丧失了增殖能力，且随着培养天数的增加，细胞存活率下降，活细胞数减少。如表2所示，辐 射一周后细胞的存活率为50%，且不同辐射剂量间无差异。经60G和100G照射的细胞，在培 养至第25天时细胞全部死亡。将上述三种剂量照射的基因工程人肺癌细胞（HG-UGM-CSF) 接种于裸鼠，均未产生肿瘤，说明致瘤性消失。
[0081] 表1粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞6°co照射后的存活率
[0082]

【权利要求】
1. 一种肿瘤疫苗及其制备方法，其特征在于：该肺癌细胞株为A549,用粒巨细胞集落 刺激因子基因修饰人肺癌细胞有如下步骤得到：用含粒巨细胞集落刺激因子的重组仙台病 毒上清感染A549,得到粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞，应用 6°Co照射使其灭 活并进行热休克处理。该粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤苗可以用于治疗肺 癌。
2. 如权利要求1所述，其特征在于：肺癌细胞株为A549。
3. 如权利要求1所述，其特征在于：应用6°Co照射使其灭活。
4. 如权利要求1所述，其特征在于：热休克处理人肺癌细胞瘤苗，具体方法：将瘤苗放 到42°C?65°C温浴0· 5h?2h。
5. 如权利要求1所述，其特征在于：该粒巨细胞集落刺激因子基因修饰人肺癌细胞瘤 苗可以用于治疗肺癌。
【文档编号】A61P35/00GK104117060SQ201310152227
【公开日】2014年10月29日 申请日期:2013年4月28日 优先权日:2013年4月28日
【发明者】赵钢, 闫贵芹, 崔国巍 申请人:天津美德佰泰医学科技发展有限公司